MUESTRAS
BIOLÓGICOS
1. INTRODUCIÓN
Art. 39 LOE 2/2006
(modificaciones LOMLOE 3/2020),
art. 68 LEA 7/2017, establece que
la FP en el Sistema
Objetivos módulo: "Gestión de muestras biológicas".
CF: TS LCyB (RD 771/2014, O. 28-octubre-2015), TS
APyC (RD 767/2014, O. 29-octubre-2015)
2. MUESTRAS BIOLÓGICAS
HUMANAS
Estudio analítico: MB,
Richard A. Mc Pherson
(2022)
Espécimen (sin procesar) /
MB (preparada)
ANALITO (sust. org/inorg,
microorg, tejido o célula)
CLASIFICACIÓN MB.
Guyton y Hall (2021)
Cualitativa
(presencia/no)
Cuantitativa (cantidad
exacta)
Semicuantitativa (presencia >/<
cantidad)
3. TIPOS DE MUESTRAS
BIOLÓGICAS, CARACTERIZACIÓN
E IDENTIFICACIÓN
3.1. TIPOS DE MB
Según origen
Fluidos/excreciones de procesos
naturales no patológicos (pnnp)
Proceden de la excreción natural:
ORINA, HECES,SEMEN, FLUJO
VAGINAL, SUDOR, SECRECIONES
NASOFARÍNGEAS, SALIVA,
JUGOS GÁSTRICOS...
Líquidos corporales orgánicos
SANGRE, LCEFALORRAQUÍDEO,
L. SINOVIAL, L. PERICÁRDICO, L.
PLEURAL, L.ASCÍNICO,
L.AMNIÓTICO
Muestras cutáneas
PIEL, PELO Y UÑAS
Muestras de cortes de
tejidos/biopsias
Visualización macro y microscópica
de tejidos
Muestras que contienen células
Estudio morfológico por citologías
Fluidos derivados de procesos
patológicos (pp)
EXUDADOS (ótico, nasal, ocular,
etc.), PUS, ESPUTO
L. CEFALORRAQUÍDEO: en los ventrículos cerebrales y el espacio subaracnoideo. Amortigua encéfalo.
3.2. CARACTERÍSTICAS
PRINCIPALES
D´Ocon Navaz, C (2006)
SANGRE: recorre el sistema circulatorio e irriga los tejidos. Aporta ox. y nutrientes y recoge residuos.
Elementos formes (en suspensión) y gases (disueltos).
ORINA: amarillento claro/oscuro. Agua, urea y cloruro sódico.
HECES. 75% agua y 25% sólidos (células epiteliales digestivas, productos descomposición
bacteriana, proteínas, grasas, etc.)
SEMEN: blanquecino y viscoso. Espermatozoides.
FLUJO VAGINAL: viscoso y mucoso. Secreción del cuello útero y vagina.
SUDOR: agua, urea, cloruro sódico, ác. láctico e iones potásicos.
SECRECIONES NASOFARÍNGEAS: de porción nasal de la faringe.
SALIVA: transparente, viscosidad variable. 99% agua, electrolitos y secreción proteica.
JUGOS GÁSTRICOS: de glándulas de pared estómago, interviene en digestión. Peptina y ác. clorhídrico.
L. SINOVIAL: viscoso y transparente. En cavidades articulares, en bolsas y vainas tendinosas.
L. PERICÁRDICO: V<50ml en CN. Entre las hojas parietal y visceral del pericardio.
L. PLEURAL. Entre la pleura parietal y visceral. Lubrica y protege pulmones en inspiración/espiración.
L. ASCÍNICO/PERITONEAL: serooso, claro. Lubrica órganos y pared abdominal.
L. AMNIÓTICO: transparente, amarillento claro. En el útero, flota feto.
PIEL: cubierta protectora del cuerpo. PELO Y UÑAS: órganos anexos a la piel.
BIOPSIA: para determinar un diagnóstico.
EXUDADO: procede de vasos sanguíneos, se deposita en tejidos. Células, proteína y m. sólida.
PUS: amarillento, verdoso, generado por proceso inflamatorio.Restos células, sueo, leucocitos,
proteínas y otras sustancias.
ESPUTO: de las vías respiratorias inferiores. 95% agua y 5% sólidos (HC, lípidos, proteínas, ADN
y enzimas).
3.3. IDENTIFICACIÓN DE MB
REQUISITOS MÍNIMOS. A todas
las alicuotas.
PACIENTE: nombre, apellidos y fecha de nacimiento; o nº de identificación exclusivo
(paciente, muestra o de hoja de petición).
MÉDICO: nº identificación
MUESTRA: fecha y hora de recogida, prueba solicitada.
Etiquetar muestra justo después de recogida: manual / etiquetas impresas (volante petición + MB) con código de
barras / sist. alternativo.
Transmisión directa sist. inform. hospital -- laboratorio.
4. RECOGIDA, CONSERVACIÓN,
TRANSPORTE Y ELIMINACIÓN
4.1. RECOGIDA Y
CONSERVACIÓN DE MB
4.1.1. VARIABLES QUE INFLUYEN
EN LA RECOGIDA
Según si se pueden o no modificar
Factores no modificables
Edad, sexo, raza,embarazo, etc.
Factores modificables
Dieta, medicación, ayuno, ejercicio
físico, tabaco, alcohol, drogas, etc.
4.1.2. PROCESOS DE
RECOGIDA DE MUESTRAS
Pautas
SANGRE
Extracción de sangre venosa
Preparar material, acomodar paciente,
comprobar identidad y ayuno, palpar vena,
desinfectar, punzar la vena, mezclar por
inversión, identificar muestra.
Extracción de sangre arterial
Femoral, braquial y radial. En lactantes:
umbilical y cuero cabelludo. Muy útil
en gasometrías.
Extracción de sangre capilar
En niños y en adultos, ej. glucosa.
En zona palmar de la falange distal
(> 1 año) y en la plantar (< 1 año).
RECOGIDA DE ORINA
Orina de una micción
1ª orina de la mañana (5-10 ml).
Lavado de manos- lavado
genitales-desechar 20/25 ml-recoger.
Niños: bolsa colectora.
Sondaje: desinfectar una porción
catéter y coger puncionando esa
zona.
Orina 24 h
Parámetros dependientes de
cantidad/día. No recoger 1ª orina,
siguientes+1ª día siguiente.
RECOGIDA DE HECES
Recipiente boca ancha (limpio y
cierre hermético) o recipiente
específico (tapón con aplicador).
Muestra no contaminada de sangre
de la menstruación o hemorroides.
SEMEN
Tras abstinencia sexual de 3 días,
sin aplicación de pomadas ni
lavado 8 horas antes. Recogida del
eyaculado completo.
Los procesos febriles alteran
resultados, esperar 1 mes. tb
alteran los medicamentos, el
alcohol, el tabaco y las drogas.
SALIVA
En tubos pequeños, 1 ml con
pipeta Pasteur.
L. CEFALORRAQUÍDEO
PUNCIÓN LUMBAR por un
facultativo especializado.
Recogida en 3 tubos estériles
(tapón rosca y herméticos):estudio
bioquímico, estudio
microbiológico, e investigación
celular.
L. PERICÁRDICO, PLEURAL,
ASCÍNICO Y ARTICULAR
PUNCIÓN PERCUTÁNEA por un
facultativo especializado.
Recogida en recipiente estéril y en
codiciones asépticas.
Determinaciones: bioquímicas (con
heparina), hematológicas (EDTA),
microbiológicas (lo antes posible).
L. AMNIÓTICO
Bajo control ecográfico en las 13-16
semanas por facultativo.
Determinación: edad feto,
localización placenta, volumen l.
amniótico.
No más 3 intentos seguidos,
esperar 24 horas.
4.1.3. CONSERVACIÓN
SANGRE, SUERO Y PLASMA
T entre extracción - centrifugación
no > 1 h.
Suero y plasma: si no se analiza en
3-4 h., refigerar o congelar.
Electrolitos, sustratos o enzimas y
[Hb] y [eritrocitos] no se alteran por
envío hasta 4 días.
Muestras determinaciones de
gases sanguíneos: en agua con
hielo (hasta 4 horas).
ORINA
Lo ideal, análisis antes de 30
minutos (proliferación bacteriana)
Hasta 6-8 h. en frío sin grandes
cambios, o añadir conservantes.
Orina de 24 h. no lleva
conservantes, alera parámetros.
HECES
Diferente conservación según
estudio:
Microbiológico: estudio en las 12
horas siguientes, conservada a 4-10ºC.
+ 24 h. añadir el mismo
volumen de solución al 5% de
formol.
Parasitológico: mantener a Tª
ambiente.
Virológico: sin medio de cultivo y
en baño de hielo.
Grasa en heces: congelada.
L. CEFALORRAQUÍDEO
Enviado lo antes posible.
Transportado en baño de hielo
unas 3 h. (No congelar)
L. PERICÁRDICO, PLEURAL,
ASCÍNICO, AMNIÓTICO Y
SINUSAL
Determinación el mismo día, o
bien, a -20ºC hasta análisi.
ESPUTO
Inmediatamente al laboratorio,
conservación a 4ºC unas horas.
OTRAS MB: SEMEN, M
VAGINALES Y URETRALES
Semen, m. vaginales y uretrales,
exudados óticos y conjuntivales a
Tª ambiente, los faríngeos a 4ºC.
4.2. TRANSPORTE DE MB
Tras identificar y acompañada de su solicitud, se envía a la Unidad de Recepción de muestras. ENVÍO: por mensajería o por tubos neumáticos (rápido, eficaz, no daña la muestra).
Envío en el < tiempo posible (evitar alteraciones). Sangre no > 1 h (altera por ej. glucosa o morfología).
4.3. ELIMINACIÓN DE MB
Evitar contaminación del personal y medio ambiente, ALMACENAR EN LUGARES RESTRINGIDOS
Eliminación según el tipo de residuo:
RESIDUOS SÓLIDOS BIOLÓGICOS ASIMILABLES A URBANOS: materiales no cortantes, no punzantes (papeles, guantes, plásticos, gasas, etc.). BOLSAS DE 220 mg/cm2 DE GALGA, en CONTENEDORES DE BASURAS ESPECIALES.
RESIDUOS SÓLIDOS BIOLÓGICOS ESPECIALES: materiales punzantes y cortantes (> potencial infeccioso). Ej. agujas, hojas de bisturí, vidrio en contacto con sangre. ENVASES RÍGIDOS, IMPERMEABLES E INACCESIBLES (un solo uso, cerrado no se puede abrir)
RESIDUOS BIOLÓGICOS LÍQUIDOS: inactivar con lejía, hipoclorito sódico al 10%.
4.4. CONSIDERACIONES
ESPECIALES DEBIDAS A LA
PANDEMIA COVID-19
Ministerio de Sanidad, Gobierno de España (2022) MUESTRAS DIAGNÓSTICO MICROBIOLÓGICO: TR superior, FROTIS NASOFARÍNGEO ó/y OROFARÍNGEO. Pediatría corta edad: sustituir frotis por LAVADO/ASPIRADO NASOFARÍNGEO.
TOMA DE MUESTRA
Frotis nasofaríngeo: con HISOPO FINO Y FLEXIBLE. 1º una narina, 2º otra. Tras alcanzar la profundidad, dejar varios sg 2/3 rotaciones de 180º. Introducir en botes estériles y conservar en nevera.
Frotis orofaríngeo: HISOPO GRUEDO Y RÍGIDO. Sujetar lengua con depresor. Introducir en botes estériles y conservar en nevera.
5. PROCESAMIENTO
Sin procesado previo: estudio macroscópico
Sometidas a procesos de preparación
ALICUOTADO
Diversos estudios: fracciones. Ej. orina 24 h / sangre.
CENTRIFUGACIÑON
Separar líquidos de sólidos. Ej. sangre coagulada o anticoagulada para bioquímica.
ADICIÓN DE ADITIVOS
Para conservación, ej. anticoagulantes o inhibidores de la glucólisis.
PREPARACIÓN PARA EL ESTUDIO AL MICROSCOPIO
Heces: dilución con agua o suero fisiológico % 1:1
ADICCIÓN DE REACTIVOS
Presencia de analito por reacción química tras añadir reactivos.