Técnicas de diagnóstico parasitológico

Utilizado para la observación de las formas móviles de los protozoos
intestinales

Heces de consistencia líquida o diarreica

Colocar una gota de la muestra en el microscopio observarlo en 40x,
esperando observar formas móviles del parásito.

Heces de consistencia norma

Mezclar muy bien una pequeña cantidad de heces con una gota de
suero fisiológico, esperando observar

10x Huevos y larvas de helmintos

Con ayuda de una gota de lugol a 40x, quistes, levaduras, isopora y
otras

Consiste en la separación de las heces

Parásitos presentes en la mustra

Restos fecales no útiles para el estudio

Utilizada para la separación de las heces como la técnica de ritchie

Adecuada para el estudio de helmintos

Sirve también para clarificar un sedimento espeso

Recomendado para la investigación de protozoos y helmintos

Se basa en que los huevos de los hemitos suban y se peguen al
portaobjetos debido a que son más livianos que la solución saturada de
cloruro sódico.

Fijar la preparacion con metanol por tres minutos

Cubrirla con Giemsa y agua destilado en un tiempo entre 30 y 45 minutos

Aclarar con agua y dejar secar la preparacion al aire

Se usa para agilizar el estudio de las muestras y así poder observar las
formas móviles de los parásitos que se encuentren en ella

Técnica de concentración, útil para la busqueda de varios parásitos y
importante donde no existe una parasitacion elevada

Tincion de Field para gota gruesa

Reactivos a utilizar:

Giemsa y agua tamponada

Tincion de Giemsa para gota gruesa

Materiales utilizados:

Tincion A y B de Field

Agua destilada

Reactivos utilizados para fijar formas vegetativas de protozoos y
teñirlos

Los protozoos se tiñen de una tonalidad verde - amarillenta intensa

A partir de esta mezcla se puede realizar técnicas de concentración
como:

Formol- eter

Tinción permanente