EXUDADOS

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EXUDADOS

RECOMENDACIONES GENERALES

Disponer de todos los suministros apropiados y organizarlos antes de comenzar con el procedimeinto de obtención de muestras.

Sólo se utiliza hisopo estéril con mango de plástico y no con mango de madera ya que puede contener sustancias que inactivan al virus e inhibem algunos análisis moleculares.

Debe recogerserse antes de transcurridos 3 días del inicio del cuadro clínico del paciente

Es un liquido que se filtra desde los vasos sanguineos hacia los tejidos cercanos. Este liquido compuesto por células, proteínas y materiales sólidos

El exudado puede supurar a partir de incisiones o de zonas de infección o inflamación. También conocido como pus.

TIPOS

EXUDADO URETRAL

MICRO0RGANISMOS CAUSANTES

Chlamydias

ELISA

I.F.I

Biologia molecular

Intracelular obligada

Bacteria

Superoxol +

Diplococos gram -

Se realiza de inmediato el frotis en portaobjetos limpio que se fija con acetona

Repetir el procedimiento con un segundo hisopo

Introducir el hisopo suavemente con un movimiento de rotación hasta penetrar unos 2 cm dentro de la uretra

Limpiar cuidadosamente el orificio de la uretra la mucosa circundante con gasas estériles

ADULTOS: Se recomienda al paciente que no orine al menos una hora antes de la toma de muestra

EN PEDIATRIA

Cuerpo extraño o gérmenes de vías aéreas superiores

No colocarse cremas

Abstinencia sexual de 48hs

Higiene habitual, no profunda, de los genitales externos

EXUDADO VAGINAL

STREPTOCOCCUS DEL GRUPO B

Incubar a 35º en atmósfera de CO por 48hs.

Posterior subcultivo en Agar Sangre carnero al 5%

Se incuba 18 a 24hs a 37º

Se siembra el hisopo en caldo Todd Hewitt con colistina (10mg/l)) y ácido nalidixico (15 mg/l)

Se toma la muestra con hisopo (dependiendo el método se utiliza 1 ó 2 hisopos) en la zona perivaginal y perianal

CULTIVO

Incubar 35-36º con humedad y tensión de CO2

Sembrar la muestra obtenida en Agar Sangre, Agar Chocolate, Agar Thayer- Martin (esta siembra se realiza con un hisopo carbonatado) y Glucosado Sabouraud (medio diseñado para investigar presencia de hongos)

Se realiza el examen Bacteriológico previa coloración de Gram

Se mide el PH y se coloca la muestra obtenida sobre un portaobjetos para realizar el examen en fresco

La muestra se toma del fondo del saco vaginal y del cuello de útero

Se coloca el espéculo (en embarazadas no) y se recoge el material con hisopo de algodón estéril

Se utiliza un hisopo estéril

ETIOLOGIA

ESPECIFICA

Gérmenes patógenos

Transmisión sexual

Condilomas

HPV

Herpes

Trichomonas vaginalis

Chlamydias Trachomatis

Neisseria gonorrhoeae

Tratamiento: Ceftriaxona.

Fermentación de glucosa

Diagnóstico: cultivo Thayer- Martin

Entéricos

Escherichia coli enterohemorrágico

Salmonella entérica

Candida spp

Enterobius vermicularis

Shigella flexneri

Medio XLD

Medio S.S

Respiratorios

Neisseria meningitidis

Oxidasa +

Fermentación de azúcares: glucosa y maltosa

Diplococo gram -

Moraxella catarrhalis

Reducción de NO3 a NO2= +

Azúcares, no oxida

Crece en agar nutritivo a 35º y agar chocolate a 22º

Streptococcus pneumoniae

Prueba de la Bacitracina y PYR

Haemophilus influenzae

INESPECÍFICA

Leucocitos

Cultivo flora comensal entérica y/o de piel

Ausencia de gérmenes

No tomar antibióticos.

No colocarse cremas, ni óvulos

Higienizarse la noche anterior ( higiene no profunda)

No tener relaciones sexuales durante 48 hs antes

Prueba para identificar el origen e infecciones vaginales

EXUDADOS DE FAUCES

INFORME

Desarrollo de

Streptococcus dysgalactiae

Streptococcus pyogenes

Desarrollo de : ESTREPTOCOCO BETA HEMOLITICO GRUPO "A" "C" ó "G"

Flora orofaringea habitual

PRUEBAS

Almidón

Hipurato

Arginina

VP

CAMP

Serologia

Pyr

Bacitracina

Bacitracina sensible- Pyr positiva

100% streptococcus pyogenes

MICROORGANISMOS CAUSANTES

Arcanobacterium haemolitycum

B hemólisis en agar sangre humana

Catalasa negativa

Corynebacterium diphteriae

Colonias negras (en medio selectivo)

Colonias blancas (en agar sangre)

Catalasa positiva

Bacilo Gram positivo

PROCEDIMIENTO

Cortar la varilla del aplicador cerca e la punta para que sea posible ajustar la tapa del tubo

Colocar de inmediato el hisopo en el tubo estéril que contenga 2 ml de medio de transporte virológico sin antibiótico

Extraer el hisopo de su envase e insertarlo en la zona faringea posterior y amigdalina, frote el hisopo sobre ambos pilares amigdalinos tratando de no tocar lengua, diente y encias

Ubicar al paciente en una posición adecuada, en lo posible pidiéndole que apoye la cabeza contra una pared para impedir que se mueva durante la obtención de la muestra

Solicitar al paciente que se suene la nariz y desechar el pañuelo

Extraer el tubo con medio de transporte virológico de su envoltorio y rotular con fechas, datos del paciente y toda la información necesaria

Utilizar el equipo de protección adecuado (lentes, mascarilla, guantes)

Lavarse las manos con agua y jabón o alcohol

INDICACIONES

Sin tomar agua

Sin aseo bucal ni enjuague bucal

No tomar antibióticos 3 días antes de la obtención de la muestra

Ayuno mínimo de 3hs, máximo 10 hs.