biologia

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IDENTIFICACION DE MICROORGANISMOS

by SEBASTIAN JAVIER MONSERRAT ARDILAA

Buenas Prácticas de Manufactura (BPM) y Gestión de Servicios de Alimentación

by Nazareth Elvir

REINO MÓNERA

by mayra alejandra mendoza beltran

Evaluación reguladora

by Coral García

Tinción de Gram

Topic principal

Proceso más utilizado a la hora de determinar la filogenia de un microorganismo. Es una de las primeras pruebas que se hace para clasificar a un posible patógeno.

Aspectos más importantes

La explicación de porqué se teñían de forma diferente tuvo que esperar hasta 1974 cuando Gregersen estableció que las diferencias entre las GRAM+ y las GRAM- eran debidas a la diferente composición de la pared celular.

Aunque las Archaea también responden a la tinción GRAM, son las especies del Reino Bacteria las que se dividen tradicionalmente entre las GRAM+ (GRAM positivas) que son aquellas bacterias que se tiñen con este procedimiento y las GRAM- (GRAM negativas) que no retienen el tinte.

Teoría de la tinción:

Las células bacterianas sanas se tiñen sin problemas con cristal violeta, un colorante básico y se tiñen poco o nada con colorantes ácidos. El cristal violeta es introducido activamente por las bacterias, por eso solo las vivas se teñirán, las características ácidas de las células procariotas son las que permiten esta coloración básica. El lugol forma un compuesto insoluble con el cristal violeta. El lavado con alcohol actúa en la pared celular y afecta a la membrana plasmática a la que se unen los péptidoglucanos de la pared en las bacterias GRAM- de tal manera que dejan salir el complejo lugol-cristal violeta. Por otra parte las GRAM+ poseen una gruesa pared de péptidoglucanos con pocos lípidos por lo que el alcohol no puede entrar y retienen el colorante. Si no se lleva a cabo correctamente las bacterias GRAM- pueden aparecer como positivas. Para concluir se añade la safranina (tinte de contraste, tiñe rojo), de esta manera las células GRAM- quedan teñidas en rojo-rosa de forma diferenciadora de las GRAM+ que se tiñen en violeta intenso o azul.

Pasos

Fijación: se deben coger bacterias sanas de un cultivo y ponerlas en un portaobjetos y secar la gota bien con mechero, sin quemar ni hervir las células, o bien al aire.

Tinción 1: durante 1 minuto se cubre la superficie donde están las bacterias con unas pocas gotas del colorante cristal violeta. Pasado este tiempo se elimina el exceso y se lava el portaobjetos con agua corriente, con cuidado para que el chorro de agua no caiga directamente sobre la muestra ni sea un flujo demasiado rápido como para eliminar las bacterias del porta.

Tinción 2: Aquí es donde se introdujeron las mejoras de Hucker, agregando lugol durante 30 segundos y decolorando con alcohol: acetona (en proporciones 1:1) 3 segundos y se vuelve a lavar como antes. La modificación de Kopeloff utiliza como decolorante alcohol-acetona (7:3) segundos y los tiempos de tinción son diferentes.

Tinción 3: Se añade safranina durante 30 segundos y se vuelve a lavar. Que puede sustituirse por carbol-fucsina, para bacterias anaerobias. Se deja secar y ya puede verse al microscopio óptico las bacterias teñidas

-Desarrollada en 1884 por el bacteriólodo danés Christian Gram. -Fue mejorado por Hucker en 1921, hallando la manera de que los reactivos fueran más estables y mejorando la calidad diferenciadora del proceso. -Existe otra modificación diseñada por Kopeloff en 1923 que permitía teñir de forma más eficiente aquellas bacterias de difícil tinción, sobre todo las anaerobias

Desarrollada en 1884 por el bacteriólodo danés Christian Gram. Fue mejorado por Hucker en 1921, hallando la manera de que los reactivos fueran más estables y mejorando la calidad del proceso. Existe otra modificación diseñada por Kopeloff en 1923 que permitía teñir de forma más eficiente aquellas bacterias de difícil tinción, sobre todo las anaerobias.