Métodos generales de diagnóstico Medicina Veterinaria

Honelako gehiago

Hemorragia Digestiva alta

by valerin esquivel

PSICOPATOLOGIA DE LA ADULTEZ Y LA VEJEZ

by danna iguaran iguaran

tipos de muerte celular

by Rafael Rivera Karen Josefina

Guía para el uso de la Clasificación Internacional de la OIT de Radiografías de Neumoconiosis

by Juan Camilo Rojas

Métodos generales de diagnóstico

Exámenes de Gabinete

Radiografías, radiografía con medios de contraste, tomografía axial computarizada, resonancia magnética, hepatogammagrama, rectosigmoidoscopía, endoscopía, electrocardiografía, etc.

Diagnóstico molecular

PCR ( Reacción en cadena de la polimerasa

Diagnóstico inmunológico

Serológicas

DOT - ELISA.

ELISA

Aglutinación ( en Tubo capilar y en látex)

Contrainmunoelectroforesis

Inmunodifusión.

Hemaglutinación.

Fijación del complemento

Intradermoreacciones

Prueba de Montenegro ( Leishmaniasis)

Prueba de Bachman ( triquinelosis)

Prueba de Casoni ( hidatidosis)

Otros métodos de diagnóstico parasitológico

Impronta : que consiste en tomar una muestra colocando un portaobjetos fuertemente sobre la lesión, se utiliza para Leishmania mexicana

Cultivos : estos se realizan para el crecimiento de protozoarios en medios específicos

 Medio axénico, monoaxénico y huevo – sangre: Amibas  Nicolle, Novy y Mc Neal (NNN) : Trypanosoma cruzi, Leishmania spp.  Medio de Johnson y Plastridge : Tritrichomona foetus

Xenodiagnóstico, que consiste en multiplicar al agente parasitario en el vector biológico que el corresponde, se utiliza en la enfermedad de Chagas o en Habronemosis

Triquinoscopia o el método de digestión artificial que se utiliza para el diagnóstico de Trichinella spiralis

Método de Knott

Decantar sobrenadante y añadir unas gotas de azul de metileno

Reposar por 10 minutos y centrifugar de nuevo a 1000 rpm por 2 minutos.

Centrifugar a 1000 rpm. Por 2 minutos.

Mezclar 1ml de sangre venosa con 10 ml de formol al 2 %.

Exámenes para el diagnóstico de parásitos hemáticos

Tinción de Giemsa, tinción de Wright

Frotis y tinción de Field.

Exámen directo

Método de Graham

Desprender la cinta con cuidado y pegarla ahora sobre un portaobjetos (la superficie adherente sobre el cristal).

Observar con objetivo de 10 X .

Aplicar el abatelenguas sobre la superficie perianal con suavidad.

Colocar una tira de cinta de acetato de celulosa (diurex) sobre un abatelenguas de madera, con la superficie adherente hacia arriba.

Raspados cutáneos

Las costras y las muestras obtenidas de raspados cutáneos de preferencia deben ser examinados inmediatamente.

Estos se realizan mediante el uso de un bisturí sin filo impregnado con aceite mineral; dicho raspado deberá ser enérgico, hasta casi producir hemorragias puntiformes.

Sangre

Las jeringas, agujas y tubos empleados para la toma de muestras de sangre, deben ser estériles y estar completamente secos. En las aves se obtiene la muestra de sangre de la vena cubito cutánea del ala o directamente mediante punción cardiaca.

En el caso de caballos, vacas, ovejas y cabras, la muestra se puede tomar directamente de la vena yugular. Asimismo se puede utilizar la vena coccígea.

En las aves se obtiene la muestra de sangre de la vena cubito cutánea del ala o directamente mediante punción cardiaca.

En el perro y en el gato se toma de las venas radial o safena, pero también se puede tomar de la yugular.

En los cerdos, la muestra se obtiene de la cava anterior, de la oreja o del rabo.

Exudados uterinos y prepuciales

HEMBRA.- Se debe de realizar previamente el aseo de la zona genital de los animales. se recolecta la muestra mediante cateterismo, empleando solución salina fisiológica (500 ml) introducida mediante una pipeta para inseminación artificial adaptada a una perilla de hule, que permite depositar la solución salina fisiológica en el útero y se proporciona masaje uterino vía rectal. Con la misma pipeta se recolecta el líquido (sol. salina) y se deposita en frascos estériles de boca ancha.

MACHO.- la toma de muestra requiere de una adecuada sujeción, inmovilización y la administración de un tranquilizante. Existen varios métodos para la toma de muestras:

- Lavado de mucosa prepucial

- Raspado prepucial mediante raspadores específicos o con catéteres de lavados uterinos.

Recolección de orina

La muestra más idónea es la obtenida mediante la micción espontánea. También se puede colectar mediante el uso de una sonda estéril o una punción suprapúbica

Es recomendada en PEQUEÑAS ESPECIES mantener en anestesia

Recolección de Heces

GRANDES ESPECIES .- Introducir la mano en el recto del animal y estimular el esfínter anal. Obtener de 20 a 40 grs. Revertir el guante y cerrarlo perfectamente Identificar la muestra y conservar en refrigeración

PEQUEÑAS ESPECIES.- Se pueden obtener las muestras al momento de la defecación o inmediatamente después de que esta haya tenido lugar. En perros se puede utilizar una cucharilla rectal de tamaño apropiado a la talla del animal.